Перейти к:
Субпопуляции моноцитов и натуральных киллеров периферической крови человека в отдаленном периоде хронического облучения
https://doi.org/10.47183/mes.2024-26-3-22-29
Аннотация
Введение. Повышенный риск развития злокачественных новообразований и заболеваний сердечно-сосудистой системы установлен для разных когорт облученных людей. При этом известна важная роль моноцитов и натуральных киллеров в модуляции воспаления и канцерогенеза.
Цель. Оценка абсолютного и относительного количества клеток в субпопуляциях моноцитов и натуральных киллеров в периферической крови у лиц, подвергшихся хроническому радиационному воздействию.
Материалы и методы. Обследованы 33 человека из когорты реки Течи, средний возраст пациентов — 74,9 года. Пациенты были разделены на три подгруппы в зависимости от величины поглощенной дозы облучения в красном костном мозге (70–249 мГр, 250–699 МГр, 700–1429 мГр соответственно), средняя поглощенная доза облучения красного костного мозга — 542,1 ± 65,3 мГр, средняя поглощенная доза облучения тимуса и периферических лимфоидных органов — 99,7 ± 14,4 мГр. Группу сравнения составили 10 человек, средний возраст — 71,8 года, без техногенного облучения в анамнезе, сопоставимых по полу и этнической принадлежности.
Результаты. Во второй дозовой подгруппе доля СD14–CD16+ моноцитов была статистически значимо выше (8,47%), чем в группе сравнения (5,52%, p = 0,014), а абсолютное количество СD14–CD16+ моноцитов (0,040×109/л) — больше, чем в третьей подгруппе (0,018×109/л, р = 0,044). Не обнаружено статистически значимых корреляций указанных показателей с факторами радиационной и нерадиационной природы.
Выводы. У людей из второй подгруппы относительное количество СD14–CD16+ моноцитов было статистически значимо выше, чем в группе сравнения, в то время как абсолютное число СD14–CD16+ моноцитов — больше, чем в третьей подгруппе, без статистически значимой взаимосвязи с факторами радиационной и нерадиационной природы.
Ключевые слова
Для цитирования:
Хоменко П.О., Кодинцева Е.А., Аклеев А.А. Субпопуляции моноцитов и натуральных киллеров периферической крови человека в отдаленном периоде хронического облучения. Медицина экстремальных ситуаций. 2024;26(3):22-29. https://doi.org/10.47183/mes.2024-26-3-22-29
For citation:
Khomenko P.O., Kodintseva E.A., Akleyev А.А. Subpopulations of monocytes and natural killer cells of human peripheral blood in the long-term period of chronic irradiation. Extreme Medicine. 2024;26(3):22-29. https://doi.org/10.47183/mes.2024-26-3-22-29
ВВЕДЕНИЕ
Повышенный риск возникновения злокачественных новообразований (ЗНО) среди жителей побережья реки Течи, пострадавших от воздействия ионизирующего излучения (ИИ), — научно установленный факт, подтвержденный эпидемиологическими исследованиями [1][2]. В работах многих авторов была выявлена корреляционная зависимость между дозой ИИ и риском развития гипертонической болезни, ишемической болезни сердца, цереброваскулярных заболеваний у облученных людей в отдаленные сроки после воздействия ИИ [3]. Однако до сих пор недостаточно изучен механизм влияния ИИ на ключевые иммунные реакции, опосредующие неопластические процессы и/или развитие сердечно-сосудистой патологии у облученных людей в отдаленные сроки воздействия ИИ [4].
Рядом авторов подчеркивается, что у людей, пострадавших в результате техногенного радиоактивного загрязнения реки Течи, по сравнению с необлученными лицами отмечались более низкие показатели интенсивности внутриклеточного кислород-зависимого метаболизма моноцитов, снижение содержания интерлейкина-4 (ИЛ-4), повышение уровней фактора некроза опухоли альфа (ФНО-α) и гамма-интерферона (ИФН-γ) в сыворотке крови [5]. В то же время для ФНО-α установлена слабая взаимосвязь с величиной поглощенной дозы облучения красного костного мозга (ККМ) [6].
При изучении патогенеза отдаленных эффектов хронического облучения моноциты/макрофаги представляют особый интерес. Роль этих клеток в регуляции гемопоэза и регенерации ККМ мало изучена и является перспективным направлением исследований [7] как в физиологических условиях, так и при поражении ККМ остеотропными радионуклидами. Моноциты и макрофаги вносят существенный вклад в развитие реакций как врожденного, так и адаптивного иммунного ответа, распознавая широкий спектр антигенных субстанций, участвуя в презентации антигена Т-лимфоцитам и регуляции иммунных ответов в зависимости от типа реакции, ее интенсивности и продолжительности, а также участвуют в формировании иммунологической памяти [8].
Для многих видов онкопатологии отмечено, что развитие воспалительного процесса, обусловленного в том числе активными моноцитами/макрофагами, потенцирует превращение предмалигнантной ткани в полностью злокачественную. Ранее отмечалось, что в патогенезе ЗНО иммунные клетки играют двойственную роль. С одной стороны, они способны эффективно и быстро распознавать, обезвреживать и элиминировать из организма стареющие, поврежденные, трансформированные и опухолевые клетки. С другой — иммуноциты, в норме обеспечивающие воспаление и удаление из организма генетически чужеродных агентов, способствуют формированию проопухолевого микроокружения, продуцируя цитокины и ростовые факторы, которые стимулируют развитие опухоли. В частности, производимый макрофагами фактор, ингибирующий миграцию макрофагов (MIF), подавляет в клетках экспрессию гена P53, одного из ключевых регуляторов клеточного цикла и апоптоза, что приводит к недостаточно эффективному ответу на повреждение ДНК, увеличению продолжительности жизни клеток и, как следствие, накоплению мутаций.
Моноциты/макрофаги продуцируют спектр ростовых факторов (в частности, сосудистый эндотелиальный фактор роста — VEGF), что способствует васкуляризации опухоли и ее метастазированию. В свою очередь, сигнальные молекулы опухоли обеспечивают хемотаксис моноцитов из периферической крови в очаг злокачественного роста и их дифференцировку в макрофаги. Сочетание гипоксии и медиаторов, выделяемых опухолевыми клетками, инициирует перепрограммирование de novo рекрутированных макрофагов микроокружения в промоутеры роста опухоли — «опухоль-ассоциированные макрофаги» [9]. Наличие в микроокружении опухоли макрофагов, тучных клеток, нейтрофилов, как правило, ассоциируется с повышенным ангиогенезом и плохим прогнозом. Однако некоторые кластеры макрофагов в микроокружении опухоли могут быть связаны с ее регрессией [10].
Цитолитическая активность натуральных киллеров (НК) определяется балансом между активирующими и подавляющими сигналами и реализуется путем перфорации мембраны клетки-мишени. НK-клетки могут экспрессировать на мембране α-цепь CD8, но в более низкой плотности, чем цитотоксические Т-клетки. Субпопуляции НК человека, экспрессирующие αα-гомодимер CD8, обладают большей цитотоксичностью, чем НK-клетки без молекулы CD8 на мембране. Сообщается, что CD38+CD8+ НК-клетки обладают высокой цитолитической активностью [11].
Полноценная активация иммуноцитов в ответ на опухолевые антигены может приводить к элиминации опухолевых клеток, тогда как неэффективные иммунные ответы на фоне хронического, ассоциированного с возрастом воспаления [12] способны привести к опухолевой прогрессии. Хронически активированные клетки врожденного иммунитета (моноциты/макрофаги, натуральные киллеры, нейтрофилы и другие) могут способствовать развитию ЗНО посредством подавления иммунных реакций, гиперпродукции активных форм кислорода, повреждающих биологические мембраны и ДНК клеток, секреции ростовых факторов и иными способами. На основании вышеизложенного изучение особенностей количественного состава субпопуляций моноцитов у облученных людей, жителей побережья реки Течи, которые в настоящее время достигли возраста реализации онкогенных эффектов, сопряженных с воздействием ИИ, является актуальным и приоритетным.
Цель работы — оценка абсолютного и относительного количества клеток в субпопуляциях моноцитов и натуральных киллеров в периферической крови у лиц, подвергшихся хроническому радиационному воздействию, в отдаленные сроки.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Исследование было выполнено на базе Уральского научно-практического центра радиационной медицины ФМБА России. Обследовано 45 хронически облученных сельских жителей, постоянно проживающих в прибрежных районах реки Течи, техногенно загрязненных в 1950-е годы вследствие деятельности производственного объединения «Маяк». Для каждого пациента предварительно были рассчитаны индивидуализированные дозы при помощи системы Techa River Dosimetry System-2016 (TRDS-2016) [13].
33 человека, у которых поглощенная доза, рассчитанная на ККМ, на момент обследования составляла 70 мГр и более, были включены в основную группу. Минимальная доза облучения, рассчитанная на ККМ, у людей из этой группы была равна 88,5 мГр, максимальная — 1429 мГр, диапазон доз, рассчитанных на тимус и периферические лимфоидные органы (ТиПЛО), составил от 12 до 460 мГр. Для детального исследования зависимости «доза–эффект» основная группа была разделена на три подгруппы в зависимости от величины накопленной дозы облучения, рассчитанной на ККМ: 1-я подгруппа — 11 человек с дозами от 70 до 249 мГр; 2-я подгруппа — 10 человек с дозами от 250 до 699 мГр; 3-я подгруппа — 12 человек с дозами от 700 до 1429 мГр.
Группу сравнения составили 10 человек, не имеющих факта техногенного воздействия ИИ в анамнезе, с поглощенной дозой облучения, рассчитанной на ККМ, менее 70 мГр. Доза облучения, рассчитанная на ККМ, у включенных в группу сравнения лиц находилась в диапазоне от 4 до 55 мГр, а доза на ТиПЛО — от 1 до 20 мГр.
Средний возраст обследованных лиц в группе сравнения был равен 71,8 ± 1,2 года, в основной группе — 74,9 ± 0,6 года. Исследуемые группы людей статистически значимо не различались по этническому и половому составу, но отличались по возрасту (p = 0,026). Данные о величине средней дозы облучения на ККМ, ТиПЛО, половом и этническом составе в обследованных группах лиц представлены в таблице 1.
Критериями исключения испытуемых из исследования являлись: признаки острых воспалительных заболеваний, хронических заболеваний в стадии обострения, почечной или печеночной недостаточности, симптомы острого нарушения мозгового кровообращения или черепно-мозговых травм в течение трех месяцев до исследования; подтвержденные онкологические и аутоиммунные заболевания; курсы гормоно-, антибиотико-, химио- и (или) радиотерапии; медицинские процедуры с применением ионизирующих излучений в течение шести месяцев перед исследованием.
Материалом для иммунологического исследования служила периферическая кровь человека. Образцы периферической крови (3 мл) получали из локтевой вены утром натощак в вакуумную пробирку с наполнителем K3-EDTA. Оценку субпопуляционного состава моноцитов и натуральных киллеров в периферической крови проводили на проточном цитометре «LongCyte C3111» (Chenglang Biotechnology, КНР) после предварительной окраски моноклональными антителами, меченными флюорохромами: СD14-PE, СD16-PerCP, СD45-APC (Elabscience, КНР) — панель для анализа моноцитов, СD3-FITC, СD56-РЕ, СD16-PerCP, CD8-PC7, СD45-APC (Elabscience, КНР), CD38-PO (Exbio, Чешская Республика) — панель для анализа НК, с последующим лизированием эритроцитов раствором «VersaLyse» (Beckman Coulter Inc., США) согласно инструкции производителей реагентов по стандартизованной методике [14]. В день взятия крови для исследования иммунологических показателей в клинико-диагностической лаборатории ФГБУН УНПЦ РМ ФМБА России пациентам выполнялся в установленном порядке общий анализ крови с подсчетом лейкоформулы [15].
Статистическую обработку данных проводили в программном пакете «Statistica 12» (демонстрационная версия). Проверка данных на нормальность распределения проводилась при помощи критерия согласия типа Колмогорова — Смирнова. Для описания нормально распределенных данных использовалось среднее арифметическое (М), минимальные и максимальные значения. Для данных, которые статистически значимо отличались от нормального распределения, приводились значения медианы, а также 25- и 75-процентильные значения.
При сравнении массивов параметрических данных применялся t-критерий Стьюдента, а для непараметрических данных использовался U-критерий Манна — Уитни. Качественные данные сравнивались с помощью критерия χ2. Статистически значимыми различия считались при уровне доверительной вероятности (р) менее 0,05. Для корреляционного анализа анормально распределенных данных был рассчитан коэффициент ранговой корреляции Спирмена с уровнем доверительной вероятности 5%.
Таблица 1. Характеристика исследуемых групп
Показатель, единица измерения |
Группа сравнения n = 10 |
Основная группа n = 33 |
|
Доза на ККМ, мГр |
22,5 ± 5,9 |
542,1 ± 65,3 |
|
Доза на ТиПЛО, мГр |
8,7 ± 2,4 |
99,7 ± 14,4 |
|
Половой состав, % |
мужчины |
20,0 |
27,3 |
женщины |
80,0 |
72,7 |
|
Этнический состав, % |
славяне |
50,0 |
21,2 |
тюрки |
50,0 |
78,8 |
Таблица подготовлена авторами по собственным данным
Примечание: данные представлены в формате среднего значения и ошибки среднего значения (M ± SE).
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
При сравнении значений исследуемых показателей у хронически облученных людей с разной дозовой нагрузкой у пациентов из второй подгруппы было обнаружено в периферической крови статистически значимое повышение абсолютного количества моноцитов с фенотипом СD14–CD16+ относительно лиц из третьей подгруппы (p* = 0,044), и техногенно не облученных пациентов (р = 0,014) (табл. 2).
Однако в процессе анализа результатов количественной оценки субпопуляций моноцитов у обследованных лиц с различной дозовой нагрузкой не было выявлено статистически значимых различий между медианными значениями исследуемых показателей в основной группе и группе сравнения.
Результаты количественного анализа субпопуляций натуральных киллеров, экспрессирующих молекулы активации CD8 и CD38 на клеточных мембранах, у обследованных лиц с разной поглощенной дозой облучения представлены в таблице 3.
Несмотря на то что у хронически облученных людей из основной группы относительно группы сравнения наблюдалось снижение медианного содержания натуральных киллеров, не экспрессирующих молекулы CD38 и CD8, и абсолютного количества CD38+ НК, статистической значимости различий не установлено по причине существенного разброса индивидуальных значений у людей из основной группы при относительно небольших размерах выборок, доверительные интервалы медианных величин перекрываются.
Вместе с тем не установлено статистически значимых различий между относительным и абсолютным количеством натуральных киллеров, экспрессирующих в различных комбинациях молекулы CD8 и CD38 на клеточной мембране, у хронически облученных людей из разных дозовых подгрупп и у лиц из группы сравнения.
При исследовании зависимости «доза–эффект» были обнаружены слабые обратные корреляционные связи между дозой, рассчитанной на ККМ, и относительным, абсолютным количеством моноцитов, абсолютным количеством моноцитов СD14+CD16– и СD14+CD16+ и относительным количеством CD3–CD16+CD56+CD8–СD38– клеток. Прямая слабая корреляционная связь была выявлена между относительным количеством НК и дозой, рассчитанной на ККМ. Корреляционные связи между исследуемыми показателями врожденного иммунитета и дозами облучения ККМ и ТиПЛО не были статистически значимыми. С целью уточнения результатов анализа зависимости исследуемых показателей врожденного иммунитета от доз облучения выборка обследуемых лиц будет расширена. У хронически облученных людей в отдаленные сроки после начала радиационного воздействия не было установлено статистически значимых корреляционных зависимостей по критерию Спирмена между количественными характеристиками лейкоцитов, лимфоцитов и моноцитов, а также проанализированных субпопуляций моноцитов и натуральных киллеров и такими факторами нерадиационной природы, как возраст, пол и этническая принадлежность, за исключением показателей, приведенных в таблице 4.
Данные, представленные в таблице 4, показывают наличие у людей из основной группы статистически значимой положительной связи возраста на момент обследования и доли неактивированных НК, а также отрицательной связи между этнической принадлежностью испытуемых и долей СD14–CD16+ моноцитов в периферической крови. Вместе с тем установлена достоверная связь между полом испытуемых и относительным, абсолютным количеством клеток в субпопуляции неактивированных НК и долей НК, одновременно экспрессирующих молекулы CD8 и СD38 на клеточной мембране. У людей из группы сравнения подобные корреляции не выявлены.
Результаты являются предварительными. В процессе работы исследуемые группы будут увеличены.
Таблица 2. Результаты количественного анализа субпопуляций моноцитов у обследованных лиц
Показатель, единица измерения |
Группа сравнения, |
Основная группа, n = 33 |
|||
Подгруппы, дозы облучения |
Медианные значения в группе |
||||
70–249 мГр, |
250–699 мГр, |
700–1429 мГр, |
|||
Лейкоциты, ×109/л |
6,14 (5,25–6,60) |
5,96 (5,30–6,51) |
5,74 (4,70–6,41) |
6,23 (5,45–7,05) |
5,96 (5,30–6,51) |
Моноциты, % |
8,2 (7,00–9,90) |
8,20 (6,40–11,00) |
7,95 (5,00–8,10) |
6,00 (3,50–9,15) |
8,00 (5,00–9,00) |
Моноциты, ×109/л |
0,452 (0,364–0,630) |
0,467 (0,376–0,679) |
0,417 (0,350–0,464) |
0,381 (0,185–0,588) |
0,420 (0,330–0,567) |
СD14+CD16– моноциты, % |
67,86 (62,45–74,00) |
65,58 (54,96–75,66) |
69,48 (62,73–73,63) |
66,96 (57,50–75,57) |
67,68 (58,36–74,80) |
СD14+CD16– моноциты, ×109/л |
0,336 (0,263–0,376) |
0,281 (0,218–0,415) |
0,305 (0,187–0,314) |
0,267 (0,128–0,328) |
0,287 (0,187–0,341) |
СD14+CD16+ моноциты, % |
4,77 (2,92–6,13) |
4,04 (2,85–8,66) |
4,25 (2,26–7,30) |
3,92 (2,57–5,81) |
4,04 (2,48–7,05) |
СD14+CD16+ моноциты, ×109/л |
0,024 (0,007–0,031) |
0,032 (0,006–0,034) |
0,015 (0,004–0,030) |
0,095 (0,007–0,019) |
0,014 (0,006–0,023) |
СD14–CD16+ моноциты, % |
5,52 (3,30–7,50) |
6,56 (3,64–8,93) |
8,47 (7,98–11,27) |
6,25 (2,76–9,01) |
7,94 (4,67–9,47) |
СD14–CD16+ моноциты, ×109/л |
0,018 (0,012–0,034) |
0,036 (0,023–0,042) |
0,040 (0,033–0,051) р* = 0,044 |
0,011 (0,007–0,029) |
0,033 (0,009–0,042) |
Таблица подготовлена авторами по собственным данным
Примечание: 1 — данные представлены в формате: медиана (25–75 процентили). 2 — р — доверительная вероятность различий относительно группы сравнения (U-критерий Манна — Уитни). 3 — р* = 0,044 — доверительная вероятность различий относительно подгруппы людей с максимальными дозами (U-критерий Манна — Уитни).
Таблица 3. Результаты количественного анализа субпопуляций НК у обследованных лиц
Показатель, единица измерения |
Группа сравнения, n = 10 |
Основная группа, n = 33 |
|||
Подгруппы, дозы облучения |
Медианные значения в группе |
||||
70–249 мГр, n = 11 |
250–699 мГр, n = 10 |
700–1429 мГр, n = 12 |
|||
Лимфоциты, % |
37,00 (32,40–45,00) |
35,00 (30,00–40,90) |
39,15 (29,60–46,00) |
36,35 (33,55–38,50) |
35,70 (30,20–41,00) |
Лимфоциты, ×109/л |
2,211 (1,701–2,619) |
1,979 (1,700–2,600) |
1,903 (1,680–2,381) |
2,145 (1,863–2,946) |
1,979 (1,739–2,600) |
НК (CD3–CD16+CD56+), % |
11,75 (9,00–15,63) |
10,87 (6,65–13,93) |
10,70 (9,56–14,72) |
13,80 (12,00–16,37) |
12,00 (7,49–15,63) |
НК (CD3–CD16+CD56+), ×109/л |
0,266 (0,163–0,350) |
0,237 (0,117–0,353) |
0,195 (0,161–0,349) |
0,302 (0,223–0,417) |
0,269 (0,160–0,353) |
CD3–CD16+CD56+CD8–СD38–, % от НК |
52,39 (17,65–65,45) |
42,95 (14,98–66,46) |
12,36 (7,83–64,86) |
22,11 (4,94–53,73) |
26,44 (10,13–64,94) |
CD3–CD16+CD56+CD8–СD38–, ×109/л |
0,111 (0,040–0,224) |
0,045 (0,031–0,102) |
0,020 (0,014–0,046) |
0,061 (0,015–0,166) |
0,043 (0,015–0,114) |
CD3–CD16+CD56+CD8+СD38+, % от НК |
7,13 (2,75–20,00) |
2,99 (0–18,92) |
10,84 (2,60–30,50) |
12,15 (2,03–32,86) |
7,10 (1,16–21,90) |
CD3–CD16+CD56+CD8+СD38+, ×109/л |
0,011 (0,005–0,036) |
0,006 (0–0,045) |
0,021 (0,001–0,049) |
0,036 (0,009–0,049) |
0,021 (0,001–0,049) |
CD3–CD16+CD56+CD8–СD38+, % от НК |
22,00 (9,27–44,51) |
18,07 (4,83–50,64) |
8,44 (0,78–29,03) |
21,28 (2,85–47,14) |
18,82 (4,83–47,14) |
CD3–CD16+CD56+CD8–СD38+, ×109/л |
0,077 (0,015–0,085) |
0,046 (0,014–0,154) |
0,010 (0,002–0,085) |
0,066 (0,011–0,099) |
0,063 (0,008–0,101) |
CD3–CD16+CD56+CD8+СD38–, % от НК |
9,14 (4,58–18,15) |
4,19 (2,48–34,05) |
18,94 (2,41–38,74) |
5,21 (1,23–22,67) |
5,44 (2,41–34,05) |
CD3–CD16+CD56+CD8+СD38–, ×109/л |
0,015 (0,008–0,042) |
0,010 (0,006–0,024) |
0,010 (0,005–0,056) |
0,012 (0,003–0,070) |
0,010 (0,005–0,056) |
Таблица подготовлена авторами по собственным данным
Примечания: 1 — данные представлены в формате: медиана (25–75 процентили).
Таблица 4. Результаты анализа корреляционных связей между отдельными факторами нерадиационной природы и исследуемыми показателями иммунитета
Пары показателей, единицы измерения |
Группа сравнения, n = 10 |
Основная группа, n = 33 |
||
SR |
p |
SR |
p |
|
СD14–CD16+ моноциты, ×109/л & Этническая принадлежность |
–0,59 |
0,072 |
–0,41 |
0,019 |
CD3–CD16+CD56+CD8–СD38–, % от НК & Возраст на момент обследования |
0,42 |
0,228 |
0,39 |
0,036 |
CD3–CD16+CD56+CD8–СD38–, % от НК & Пол |
0,09 |
0,811 |
0,50 |
0,005 |
CD3–CD16+CD56+CD8–СD38–, ×109/л & Пол |
–0,17 |
0,631 |
0,46 |
0,010 |
CD3–CD16+CD56+CD8+СD38+, % от НК & Пол |
0,17 |
0,631 |
0,36 |
0,050 |
Таблица подготовлена авторами по собственным данным
Примечания: SR — коэффициент корреляции Спирмена; р — доверительная вероятность.
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
Результаты исследования согласуются с ранее полученными результатами иммунологических обследований хронически облученных людей из когорты реки Течи и дополняют их. При этом основным дозообразующим радионуклидом был остеотропный стронций-90 (90Sr), характерной особенностью которого является длительный период полураспада (около 30 лет), кумуляция в костной ткани и длительное воздействие ИИ на центральный орган иммунной системы и гемопоэза — ККМ. Уникальный характер радиационного воздействия, а именно сочетание внешнего γ-излучения и внутреннего, преимущественно β-излучения за счет 90Sr, по всей видимости, и лежит в основе долговременных изменений со стороны иммунной системы у жителей когорты реки Течи. Не выявлено изменений абсолютного количества лейкоцитов, относительного и абсолютного содержания моноцитов в крови между облученными и необлученными участниками исследования.
Субпопуляционный состав моноцитов и экспрессия молекул активации на натуральных киллерах в периферической крови людей из когорты реки Течи в отдаленные сроки после хронического радиационного воздействия исследуется впервые.
Моноциты/макрофаги — гетерогенный кластер клеток, обладающих большой пластичностью и множеством функций, обусловленных типом активирующего сигнала. Это радиорезистентные клетки, функции которых могут модулироваться воздействием (ИИ): в зависимости от дозы облучения и фракционирования эти клетки выполняют про- или противовоспалительную, про- или противоопухолевую активность. В настоящее время не представляется возможным систематизировать информацию о конкретных радиационно-индуцированных модуляциях моноцитов/макрофагов [16].
Молекула CD14 — разновидность толл-подобных рецепторов (Toll-like receptor, TLR), появляется на ранних стадиях созревания моноцитов и является их специфическим маркером [16]. Дифференцировка классических CD14++CD16– моноцитов происходит из костномозгового миелоидного предшественника. За пределами ККМ они созревают в промежуточные CD14++CD16+ моноциты, дифференцируются в неклассические CD14+CD16++ моноциты и далее в виде тканевых макрофагов и дендроцитов осуществляют ремоделирование и репарацию поврежденных тканей [17][18]. Позднее созревание периферических моноцитов сопровождается экспрессией FcγRIII (CD16) на мембране клеток при одновременном снижении количества молекул CD14. При этом экспрессия CD16 сопряжена с повышенной способностью моноцитов к презентации антигена, которая увеличивается с утратой экспрессии CD14 на мембране клеток [7]. Относительно низкая фагоцитарная активность, более высокая способность к выработке цитокинов и презентации антигена у таких клеток обусловлена более высокой экспрессией молекул главного комплекса гистосовместимости второго класса (MHC II) [19].
Субпопуляции моноцитов выполняют разные функции, которые определяются либо состоянием их микроокружения, представляющим сложнейшую цитокино-клеточную систему, либо их линейной дифференцировкой [18]. Функционально все моноциты/макрофаги условно классифицируются на два типа: провоспалительные (М1), которые преимущественно продуцируют ИЛ-18, ИЛ-12, ИЛ-26 и тем самым стимулируют ответы Th1 и Th17, и противовоспалительные (M2), которые в основном продуцируют ИЛ-10 и трансформирующий фактор роста бета (transforming growth factor beta, TGF-β), участвуют в иммунорегуляции и восстановлении тканей. Между этими двумя кластерами клеток существуют множество промежуточных и переходных форм, поддерживается динамический баланс цитокинов в зависимости от текущих потребностей макроорганизма [7].
Способность макрофагов отвечать на различные эндогенные и экзогенные про- и противовоспалительные стимулы обеспечивает высокую гетерогенность их фенотипа. ИФН-γ активирует провоспалительные макрофаги (M1), которые участвуют в Th1-зависимом иммунном ответе на онкотрансформированные клетки-мишени. Противовоспалительные макрофаги (M2) задействованы в иммунных реакциях с участием Th2, процессах репарации и патогенезе некоторых опухолей. В спектр продуцируемых М2-клетками цитокинов входят ИЛ-1, ИЛ-6, ИЛ-10, сосудистый эндотелиальный фактор роста (vascular endothelial growth factor, VEGF) и TGF-β, которые при определенных условиях обеспечивают пролиферацию и метастазирование опухолевых клеток. Субпопуляция моноцитов c фенотипом CD14lowCD16bright «неклассические моноциты» соответствует противовоспалительным клеткам [7].
Нормальные моноциты/макрофаги играют важную роль в реализации противоопухолевого иммунного надзора, антиген-опосредованно активируя Т-цитотоксические клетки или осуществляя непосредственный лизис опухолевых клеток в активированном состоянии. Активированные макрофаги за счет лизирующих ферментов, синтеза ФНО-α и продукции свободных радикалов проявляют противоопухолевую активность. Промежуточные моноциты в сравнении с моноцитами других субпопуляций являются основными продуцентами ИЛ-1β, ИЛ-6 и ФНО-α, обладают наибольшей способностью к трансэндотелиальной миграции и образованию активных форм кислорода [20, 21].
Известно, что для онкотрансформированных клеток характерна сниженная экспрессия молекул главного комплекса гистосовместимости I класса, что модифицирует ингибирующие сигналы от других рецепторов НК. Активирующие рецепторы НK взаимодействуют со стресс-индуцируемыми протеинами, которые экспрессируются опухолевыми клетками. В НK-клетках происходит запуск секреторного процесса — везикулы цитоплазмы, содержащие сериновые эстеразы (гранзимы А и В), высвобождаются локальным экзоцитозом в пространство между клеткой-эффектором и мишенью. У НК специализированный механизм киллинга трансформированных клеток связан с перфорином, содержащимся внутри гранул, который обладает литической активностью в отношении клеток-мишеней. Сразу после связывания лимфоцита с клеткой-мишенью в ее мембране формируются поры, происходит экзоцитоз гранул НК и выход их содержимого — гранзимов и перфорина. Далее в клетке-мишени запускается каскад литических процессов, что приводит к деградации дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) и последующей клеточной смерти. Способность НК к синтезу цитокинов, в первую очередь ИФН-γ и других, обусловливает их участие в регуляции других звеньев противоопухолевого иммунитета [11].
В научной литературе обсуждается гипотеза о том, что в отдаленные сроки после воздействия ИИ на организм стареющие клетки (в первую очередь лейкоциты и макрофаги, а также фибробласты и другие) являются одним из основных и постоянных источников активных форм кислорода и активных форм азота в тканях, что способствует поддержанию в них высокого уровня свободных радикалов и может привести к повреждению клеток и субклеточных структур вплоть до фиброза и неопластической трансформации [22][23].
Следует особо подчеркнуть, что выявленные особенности иммунного статуса более выражены у хронически облученных людей с максимальными поглощенными дозами, рассчитанными на ККМ, они были зарегистрированы в период реализации канцерогенных эффектов облучения и могут играть определенную роль в их развитии. Результаты корреляционного анализа влияния факторов нерадиационной природы у людей из исследуемых групп требуют значительной осторожности в интерпретации в связи с относительно небольшим размером выборок — фактором, который вносит значительную неопределенность при оценке парных корреляций.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
В ходе исследования были выявлены статистически значимые изменения в субпопуляциях моноцитов у людей, подвергшихся хроническому радиационному воздействию. В частности, у лиц, облученных в диапазоне доз на ККМ от 250 и до 699 мГр, относительное количество моноцитов с фенотипом CD14–CD16+ было значимо выше, чем в группе сравнения, а их абсолютное количество превышало аналогичный показатель у лиц из третьей подгруппы с максимальной дозовой нагрузкой. Полученные у практически здоровых облученных людей из когорты реки Течи предварительные результаты могут свидетельствовать о некотором латентном напряжении регуляторных механизмов в иммунной системе, в частности системах моноцитов/макрофагов и НК, которые действуют по принципу обратной связи и направлены на компенсацию провоспалительных иммунных сдвигов [23], в меньшей степени выраженных у необлученных лиц.
Абсолютное количество лейкоцитов, относительное и абсолютное количество моноцитов, относительное и абсолютное количество моноцитов с фенотипами СD14+CD16–, СD14+CD16+, СD14–CD16+ у всех обследованных людей из основной группы и группы сравнения статистически значимо не различались. Относительные и абсолютные количества натуральных киллеров, экспрессирующих в различных комбинациях молекулы CD8 и CD38 на клеточной мембране, статистически значимо не различались у хронически облученных людей и лиц из группы сравнения.
Не выявлено статистически значимых корреляций Спирмена между исследуемыми показателями врожденного иммунитета и факторами радиационной природы у хронически облученных людей.
Исследование субпопуляций моноцитов и натуральных киллеров в периферической крови у хронически облученного населения прибрежной зоны реки Течи будет продолжено.
Список литературы
1. Крестинина ЛЮ, Силкин СС, Дегтева МО, Аклеев АВ. Риск смерти от болезней системы кровообращения в Уральской когорте аварийно-облученного населения за 1950–2015 годы. Радиационная гигиена. 2019;12(1):52–61. https://doi.org/10.21514/1998-426X-2019-12-1-52-61
2. Крестинина ЛЮ, Силкин СС, Микрюкова ЛД, Епифанова СБ, Аклеев АВ. Риск заболеваемости солидными злокачественными новообразованиями в Уральской когорте аварийнооблученного населения: 1956–2017. Радиационная гигиена. 2020;13(3):6–17. https://doi.org/10.21514/1998-426X-2020-13-3-6-17
3. Azizova TV, Haylock RGE, Moseeva MB, Bannikova MV, Grigoryeva ES. Cerebrovascular diseases incidence and mortality in an extended Mayak worker cohort 1948–1982. Radiat Research. 2014;182(5):529–44. https://doi.org/10.1667/RR13680.1
4. Sources, effects and risks of ionizing radiation. United Nations Scientific Committee on the Effects of Atomic Radiation UNSCEAR 2020/2021. Report to the General Assembly, with Scientific Annexes. New York: United Nations; 2021. https://doi.org/10.18356/9789210010030
5. Аклеев АА. Иммунный статус человека в отдаленном периоде хронического радиационного воздействия. Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2020;4(65):29– 35. https://doi.org/10.12737/1024-6177-2020-65-4-29-35
6. Кодинцева ЕА, Аклеев АА, Блинова ЕА. Цитокиновый профиль лиц, подвергшихся хроническому радиационному воздействию, в отдаленные сроки после облучения. Радиационная биология. Радиоэкология. 2021;5(61):506–14. https://doi.org/:10.31857/S0869803121050076
7. Lambert C, Sack U. Monocytes and macrophages in flow: an ESCCA initiative on advanced analyses of monocyte lineage using flow cytometry. Cytometry Part B. 2017;92(3):180–8. https://doi.org/10.1002/cyto.b.21530
8. Грачев АН, Самойлова ДВ, Рашидова МА, Петренко АА, Ковалева ОВ. Макрофаги, ассоциированные с опухолью: современное состояние исследований и перспективы клинического использования. Успехи молекулярной онкологии. 2018;5(4):20–8. https://doi.org/10.17650/2313-805X-2018-5-4-20-28
9. Балпанова ГТ, Бижигитова ББ. Хроническое воспаление и рак. Вестник КазНМУ. 2017;4:424–6.
10. Conniot J., Silva JM, Fernandes JG. Cancer immunotherapy: nanodelivery approaches for immune cell targeting and tracking. Frontiers in Chemistry. 2014;2:1–27. https://doi.org/10.3389/fchem.2014.00105
11. Абакушина ЕВ. Метод проточной цитометрии для оценки NK-клеток и их активности. Клиническая лабораторная диагностика. 2015;60(11):37–44.
12. Khatami M. Chronic inflammation: synergistic interactions of recruiting macrophages (TAMs) and eosinophils (Eos) with host mast cells (MCs) and tumorigenesis in CALTs. M-CSF, suitable biomarker for cancer diagnosis. Cancers. 2014;6(1):297–322. https://doi.org/2072-6694/6/1/297
13. Дегтева МО., Напье БА, Толстых ЕИ, Шишкина ЕА, Бугров НГ, Крестинина ЛЮ и др. Распределение индивидуальных доз в когорте людей, облученных в результате радиоактивного загрязнения реки Течи. Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2019;64(3):46–53. https://doi.org/10.12737/article_5cf2364cb49523.98590475
14. Хайдуков С.В., Байдун Л.В., Зурочка А.В., Тотолян А.А. Стандартизованная технология Исследование субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови с применением проточных цитофлюориметров-анализаторов. Российский иммунологический журнал. 2014;8(17):974–992.
15. Кишкун АА., Беганская ЛА. Клиническая лабораторная диагностика: учебник: в 2 т. 2-е изд., перераб. и доп. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2021. https://doi.org/10.33029/9704-6084-9-CLD1-2021-1-784
16. Deloch L, Rückert M, Weissmann T, Lettmaier S, Titova E, Wolff T et all. The various functions and phenotypes of macrophages are also reflected in their responses to irradiation: A current overview. International review of cell and molecular biology. 2023;(376):99–120. https://doi.org/10.1016/bs.ircmb.2023.01.002
17. Повещенко А.Ф., Шкурат Г.А., Колесников А.П., Коненков В.И. Функциональная и фенотипическая характеристика макрофагов при остром и хроническом воспалении. Макрофаги сторожевых лимфатических узлов. Успехи физиологических наук. 2015;46(1):105–12.
18. Земсков ВМ, Ревишвили АШ, Козлова МН, Шишкина НС, Куликова АН, Балбуцкий АВ. и др. Анализ субпопуляций моноцитов при сердечно-сосудистой, ожоговой и иной патологии (классификация 2010 г.). Медицинский совет. 2023;17(4):54–63. https://doi.org/10.21518/ms2023-002
19. Gu BJ, Sun C, Fuller S, Skarratt KK, Petrou S, Wiley JS. A quantitative method for measuring innate phagocytosis by human monocytes using real-time flow cytometry. Cytometry. Part A. 2014;85(4):313–21. https://doi.org/10.1002/cyto.a.22400
20. Aw NH, Canetti E, Suzuki K, Goh J. Monocyte subsets in atherosclerosis and modification with exercise in humans. Antioxidants. 2018;7(12):1–12. https://doi.org/2076-3921/7/12/196
21. Williams H, Mack CD, Li SCH, Fletcher JP, Medbury HJ. Nature versus number: monocytes in cardiovascular disease. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(17):1–21. https://doi.org1422-0067/22/17/9119
22. Citrin DE, Mitchell JB. Mechanisms of normal tissue injury from irradiation. Seminars in radiation oncology. Seminars in Radiation Oncology. 2017;27(4):316–24. https://doi.org/10.1016/j.semradonc.2017.04.001
23. Kim JH, Brown SL, Gordon MN. Radiation-induced senescence: therapeutic opportunities. Radiation Oncology. 2023;1(1):1–11. https://doi.org/10.1186/s13014-022-02184-2
Об авторах
П. О. ХоменкоРоссия
Хоменко Полина Олеговна
Челябинск
Е. А. Кодинцева
Россия
Кодинцева Екатерина Александровна, канд. биол. наук
Челябинск
А. А. Аклеев
Россия
Аклеев Андрей Александрович, д-р мед. наук
Челябинск
Дополнительные файлы
Рецензия
Для цитирования:
Хоменко П.О., Кодинцева Е.А., Аклеев А.А. Субпопуляции моноцитов и натуральных киллеров периферической крови человека в отдаленном периоде хронического облучения. Медицина экстремальных ситуаций. 2024;26(3):22-29. https://doi.org/10.47183/mes.2024-26-3-22-29
For citation:
Khomenko P.O., Kodintseva E.A., Akleyev А.А. Subpopulations of monocytes and natural killer cells of human peripheral blood in the long-term period of chronic irradiation. Extreme Medicine. 2024;26(3):22-29. https://doi.org/10.47183/mes.2024-26-3-22-29