Оценка гепатопротекторного эффекта антиоксидантов на амиодарон-индуцированную цитотоксичность в клетках гепатомы человека линии HepaRG
https://doi.org/10.47183/mes.2021.030
Аннотация
Для эффективной терапии амиодарон-индуцированной гепатотоксичности необходимы изучение механизмов токсического действия амиодарона на гепатоциты и оценка возможного влияния гепатопротекторов. Целью работы было исследовать гепатопротекторный эффект антиоксидантов на амиодарон-индуцированную цитототоксичность с использованием иммортализованной гепатомы человека линии HepaRG. Жизнеспособность клеток оценивали при действии амиодарона и в смеси с витамином Е, N-ацетилцистеином и S-аденозилметионином методом импедансометрии, а также определяли содержание некоторых биомаркеров гепатотоксичности с использованием технологии Luminex xMAP. В результате исследования установлен дозозависимый эффект токсического действия амиодарона, IC50 амиодарона для линии HepaRG составил 3,5 мкМ. Показано, что в присутствии витамина Е, N-ацетилцистеина и S-аденозилметионина снижается цитотоксический эффект и увеличивается значение IC50. Амиодарон снижает активность регуляторов клеточного цикла: киназ AKT, JNK и белка p53. В результате действия амиодарона уменьшается содержание АТФ в клетках и наблюдается выход внутриклеточных ферментов (малатдегидрогеназы 1, глутатион-S-трансферазы, сорбитолдегидрогеназы, 5'-нуклеотидазы) в кондиционную среду, что свидетельствует о клеточной гибели по типу некроза. Таким образом, витамин Е, S-аденозилметионин и N-ацетилцистеин снижают цитотоксичность амиодарона в модели амиодарон-индуцированного повреждения гепатоцитов и могут быть рассмотрены в качестве гепатопротекторов при необходимости защиты тканей печени от гепатотоксических эффектов амиодарона.
Ключевые слова
Об авторах
К. С. ФилимоноваРоссия
ст. Капитолово, к. 93, п. Кузьмоловский, Ленинградская область, 188663
Н. Ю. Роговская
Россия
ст. Капитолово, к. 93, п. Кузьмоловский, Ленинградская область, 188663
П. П. Бельтюков
Россия
ст. Капитолово, к. 93, п. Кузьмоловский, Ленинградская область, 188663
В. Н. Бабаков
Россия
Владимир Николаевич Бабаков
ст. Капитолово, к. 93, п. Кузьмоловский, Ленинградская область, 188663
Список литературы
1. Ивашкин В. Т., Барановский А. Ю., Райхельсон К. Л. и др. Лекарственные поражения печени (клинические рекомендации для врачей). Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2019; 29 (1): 101–31.
2. Stine JG, Lewis JH. Current and future directions in the treatment and prevention of drug-induced liver injury: a systematic review. Expert Rev Gastroenterol Hepatol. 2016; 10 (4): 517–36.
3. Mujović N, Dobrev D, Marinković M, et al. The role of amiodarone in contemporary management of complex cardiac arrhythmias. Pharmacol Res. 2020; 151: 104521.
4. Hashmi A, Keswani NR, Kim S, et al. Hepatic dysfunction in patients receiving intravenous amiodarone. South Med J. 2016; 109 (2): 83–6.
5. Waldhauser KM, Török M, Ha H-R, et al. Hepatocellular toxicity and pharmacological effect of amiodarone and amiodarone derivatives. J Pharmacol Exp Ther. 2006; 319 (3): 1413–23.
6. Serviddio G, Bellanti F, Giudetti AM, et al. Mitochondrial oxidative stress and respiratory chain dysfunction account for liver toxicity during amiodarone but not dronedarone administration. Free Radic Biol Med. 2011; 51 (12): 2234–42.
7. Golli-Bennour EE, Bouslimi A, Zouaoui O, et al. Cytotoxicity effects of amiodarone on cultured cells. Exp Toxicol Pathol. 2012; 64 (5): 425–30.
8. Schumacher JD, Guo GL. Mechanistic review of drug-induced steatohepatitis. Toxicol Appl Pharmacol. 2015; 289 (1): 40–7.
9. Grünig D, Duthaler U, Krähenbüh S. Effect of Toxicants on Fatty Acid Metabolism in HepG2 Cells. Front Pharmacol. 2018; 9: 257.
10. Erez N, Hubel E, Avraham R, et al. Hepatic amiodarone lipotoxicity is ameliorated by genetic and pharmacological inhibition of endoplasmatic reticulum stress. Toxicol Sci. 2017; 159 (2): 402–12.
11. Durukan AB, Erdem B, Durukan E, et al. May toxicity of amiodarone be prevented by antioxidants? A cell-culture study. J Cardiothorac Surg. 2012; 7 (1): 61.
12. Galli F, Azzi A, Birringer M, et al. Vitamin E: Emerging aspects and new directions. Free Radic Biol Med. 2017; 102: 16–36.
13. Chughlay MF, Kramer N, Spearman CW, et al. N‐acetylcysteine for non–paracetamol drug–induced liver injury: a systematic review. Br J Clin Pharmacol. 2016; 81: 1021–9.
14. Anstee QM, Day CP. S-adenosylmethionine (SAMe) therapy in liver disease: A review of current evidence and clinical utility. J Hepatol. 2012; 57 (5): 1097–109.
15. Aninat C, Piton A, Glaise D, et al. Expression of cytochromes P450, conjugating enzymes and nuclear receptors in human hepatoma HepaRG cells. Drug Metab Dispos. 2006; 34 (1): 75–83.
16. Yokoyama Y, Sasaki Y, Terasaki N, et al. Comparison of drug metabolism and its related hepatotoxic effects in HepaRG, cryopreserved human hepatocytes, and HepG2 cell cultures. Biol Pharm Bull. 2018; 41 (5): 722–32.
17. Tomida T, Okamura H, Yokoi T, et al. A modified multiparametric assay using HepaRG cells for predicting the degree of druginduced liver injury risk. J Appl Toxicol. 2017; 37 (3): 382–90.
18. Wu Y, Geng X, Wang J, et al. The HepaRG cell line, a superior in vitro model to L-02, HepG2 and hiHeps cell lines for assessing drug-induced liver injury. Cell Biol Toxicol. 2016; 32 (1): 37–59.
19. McGovern B, Garan H, Ruskin JN. Serious adverse effects of amiodarones. Clin Cardiol. 1984; 7 (3): 131–7.
20. Pessayre D, Fromenty B, Berson A, et al. Central role of mitochondria in drug-induced liver injury. Drug Metab Rev. 2012; 44 (1): 34–87.
21. Anthérieu S, Rogue A, Fromenty B, et al. Induction of vesicular steatosis by amiodarone and tetracycline is associated with upregulation of lipogenic genes in heparg cells. Hepatology. 2011; 53 (6): 1895–905.
22. Ye H, Nelson LJ, Gómez del Moral M, et al. Dissecting the molecular pathophysiology of druginduced liver injury. World J Gastroenterol. 2018; 24 (13): 1373–85.
23. Yuan L, Kaplowitz N. Mechanisms of drug induced liver injury. Clin Liver Dis. 2013; 17 (4): 507–18.
24. Iorga A., Dara L. Cell death in drug-induced liver injury. Adv Pharmacol. 2019; 85: 31–74.
25. Ali SE, Waddington JC, Park BK, et al. Definition of the Chemical and Immunological Signals Involved in Drug-Induced Liver Injury. Chem Res Toxicol. 2020; 33 (1): 61–76.
26. Bognar Z, Fekete K, Antus C, et al. Desethylamiodarone — A metabolite of amiodarone — Induces apoptosis on T24 human bladder cancer cells via multiple pathways. PLoS One. 2017; 12 (12): e0189470.
27. Steinberg E, Fluksman A, Zemmour C, et al. Low dose amiodarone reduces tumor growth and angiogenesis. Sci Rep. 2020; 10 (1): 18034.
28. Abdulkhaleq F, Alhussainy T, Badr M, et al. Antioxidative stress effects of vitamins C, E, and B12, and their combination can protect the liver against acetaminophen-induced hepatotoxicity in rats. Drug Des Devel Ther. 2018; 12: 3525–33.
Рецензия
Для цитирования:
Филимонова К.С., Роговская Н.Ю., Бельтюков П.П., Бабаков В.Н. Оценка гепатопротекторного эффекта антиоксидантов на амиодарон-индуцированную цитотоксичность в клетках гепатомы человека линии HepaRG. Медицина экстремальных ситуаций. 2021;23(3):46-54. https://doi.org/10.47183/mes.2021.030
For citation:
Filimonova K.S., Rogovskaya N.Yu., Beltyukov P.P., Babakov V.N. Assessing hepatoprotective effects of antioxidants on amiodarone-induced cytotoxicity in human hepatoma HepaRG cell line. Extreme Medicine. 2021;23(3):46-54. https://doi.org/10.47183/mes.2021.030